服务介绍 Service Introduction
RNA干扰(RNA interference,RNAi)是一种高效特异的基因缺失性研究工具,是Andrew Fire 和Craig Mello在线
虫中发现的一种由双链RNA(dsRNA)介导的基因沉默现象,几乎存在于所有真核生物中。RNAi已经广泛应用于各种真
核生物的基因功能研究,药靶发现及药物筛选。近年来,多种临床试验表明靶向致病基因的RNAi药物具有治疗困扰人类多
年疾病的巨大潜力。
小干扰RNA(short interfering RNA,siRNA,~ 21nt dsRNA),可以引起与之序列匹配的靶基因mRNA 的降
解,从而导致细胞或机体产生基因沉默的表型。锐博生物提供人、小鼠、大鼠及其他物种的siRNA设计与合成,包括细胞
使用用标准纯化siRNA、动物实验用in vivo siRNA、化学修饰siRNA、siRNA预制文库、定制型文库以及普通对照和荧光
转染对照,根据客户需求提供从从小规模到大规模的siRNA合成服务。
艾基生物拥有成熟高效的基因合成平台,仅需提供目的核苷酸或氨基酸序列信息,即可人工合成任何您感兴趣的基
因,包括重复、发 夹、高 GC、毒性基因等困难基因序列,完全不受基因来源限制。另可依据密码子在不同宿主细胞的
偏爱性和不同的实验需求,提供免费 的密码子优化服务,提高您下游实验的成功率。
图 1 siRNA的作用原理示意图
图 2 siRNA产品包装盒
服务特色 Service Advantages
常规化学合成siRNA多为19nt RNA+dTdT(3'悬垂)的RNA双链分子,未经任何化学修饰
Sense:正义链,RNA,序列与靶序列相同
Antisense:反义链,RNA,序列与靶序列互补
dTdT:两端悬垂,DNA,均在3'端
还支持各种特殊修饰或突变设计
图 3 siRNA结构示意图
代表性客户文章(siRNA相关) Articles
1 Lu, Y. et al. CLP36 promotes p53 deficient sarcoma progression through suppression of atrophin-1
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FAQ
1. siRNA是什么?
siRNA(small interfering RNA)是一类长度约为20-25个核苷酸的双链RNA分子。它在细胞中通过与互补的mRNA
结合并诱导其降解,从而抑制特定基因的表达。
2. siRNA的作用机制是什么?
siRNA的作用机制主要包括以下步骤:
长双链RNA(dsRNA)被Dicer酶切割成21-25个核苷酸的siRNA,siRNA被整合到RNA诱导沉默复合体(RISC)中,
在RISC中,siRNA的正义链被降解,反义链作为引导链,引导链与靶mRNA互补结合,RISC中的核酸酶切割靶
mRNA,导致其降解,从而抑制基因表达。
3. siRNA有哪些应用?
基因功能研究:通过特异性敲低基因表达,研究基因在细胞中的功能。
药物靶点验证:用于验证潜在药物靶点的有效性。
疾病治疗:理论上可以沉默任何与疾病相关的基因,用于治疗多种疾病。
基因沉默工具:在基因沉默研究中被广泛应用。
4. 如何设计siRNA?
选择GC含量在30%-52%的序列,避开5'和3'端的非编码区;比对基因组数据库,排除与其他编码序列同源的序列;合
成多个靶序列的siRNA,筛选出最有效的序列;设计阴性对照siRNA,确保实验结果的可靠性。
5. siRNA转染方法有哪些?
常见的siRNA转染方法包括磷酸钙共沉淀、电穿孔法、DEAE葡聚糖、机械法(如显微注射和基因枪)和阳离子脂质体
试剂转染法。其中,阳离子脂质体试剂转染法是最常用的方法。
6. siRNA在体内应用面临的挑战有哪些?
稳定性差:易被血液中的核酸内切酶水解。
细胞膜渗透性差:带负电荷的siRNA难以穿透细胞膜。
脱靶效应:可能干扰与靶mRNA部分同源的其他mRNA。
免疫反应:过长的siRNA可能激活免疫反应。
7. 如何提高siRNA的稳定性和递送效率?
化学修饰:通过糖修饰、磷酸盐主链修饰或碱基修饰提高siRNA的稳定性;
使用递送系统:如纳米载体、适体、多肽、蛋白质和抗体等。
8. siRNA与miRNA的区别是什么?
来源:siRNA是人工合成的,miRNA是内源的。
结构:siRNA是双链RNA,miRNA是单链RNA。
作用位置:siRNA可作用于mRNA的任何部位,miRNA主要作用于靶基因的3'-UTR区。
siRNA-靶基因敲低效率验证
细胞实验方法 Methods
转染效率对不同的细胞株和不同的转染试剂是不同的。我们仅以转染试剂LipofectamineTM 2000为例说明转染方法。为
了降低细胞密度、试剂用量,转染效率等因素导致的孔间差异,保证实验的可靠性和可重复性,我们建议:
1.转染实验中每个转染样品至少设置3个复孔;
2.转染实验分组设置建议:
1)荧光对照siRNA组(检测转染效率);
2)空白对照组(不含转染试剂和siRNA);
3)转染试剂对照组(不含siRNA);
4)阴性对照siRNA组;
5)阳性对照siRNA组;
6)实验siRNA组;
3.接种细胞时,每孔接种的细胞数量尽量保持一致,尽量使细胞在各孔的表面平均分布。
一、转染浓度
1) 为了获得最佳基因阻断结果,每一种细胞系转染siRNA的量都需要经过实验确定。如果您是首次转染您的细胞系,
推荐尝试使用几个 LipofectamineTM 2000的浓度,并在20-100nM范围内改变siRNA的浓度,以确定达到最佳基因阻断
水平所需要的条件。高浓度的 siRNA可能具有细胞系依赖性。
2) 在30-50%细胞汇合度时进行转染。通常基因沉默分析至少要在转染后24-72h进行。低密度转染细胞可以使转染
和分析之间更长的间隙更长,从而使由于细胞过度生长造成的细胞活性损害减少到最低。根据靶基因的特性,高密度转染
的细胞可能更加适合条件的优化。
3) 不要在转染时的培养基中加入抗生素,因为这将会降低细胞转染的效率和导致细胞死亡。
4) 为获得更好的结果,可以使用Invitrogen的Opti-MEM 低血清培养基在形成复合物前稀释LipofectamineTM 2000
和siRNA。可以使用荧光标记的siRNA帮助优化细胞系的转染条件。一旦确定了用来转染的最佳条件,可以在每一次实验
都包括荧光标记siRNA,作为转染效率的指示剂。
二、转染步骤
以LipofectamineTM 2000转染siRNA于24孔板,转染浓度为50nM为例,其他规格容器转染请参考表2。
注:转染成功是siRNA 发挥作用的前提,寡核酸转染效率主要为细胞性质和转染方法所决定,需要选择对实验细胞转
染率高且毒性低的转染试剂和转染方法。
1)接种细胞
贴壁细胞:转染前24h,在400uL无抗培养基中接种0.5-2×105个细胞,转染时细胞融合度为50-70%。(注:铺板时要
将细胞消化完全、混匀,避免细胞堆积生长。)
悬浮细胞:转染前24h,在400uL无抗培养基中接种0.5-2×105个细胞,转染时细胞数量应在4-8×105/孔。
注:需根据细胞的增殖速度、对转染的毒性反应以及检测时间等调整转染时的细胞密度,除特定实验 (如划痕实验等)外,
一般以到检测时间点时细胞未完全长满为宜。
2)转染步骤
A. 用50uLOpti-MEM稀释siRNA(转染细胞的终浓度为50nM),轻轻吹吸3-5次混匀。
B. 轻轻颠倒混匀转染试剂,用50uL Opti-MEM 稀释1.0uL LipofectamineTM 2000,轻轻吹吸3-5次混匀,室温下静置5min。
C. 混合转染试剂和siRNA稀释液,轻轻吹吸3-5次混匀,室温下静置20min。
注:混合液可室温放置一段时间,但不宜超过 24h
D.转染复合物逐滴加入到24孔细胞板中,100uL/孔,前后轻摇细胞板混合均匀。
注:转染复合物加入至原细胞培养基中一般无需移除或更换, 但亦可依据具体实验情况进行优化
E.细胞板置于37℃、5%CO2培养箱中培养18-48h。转染4-6h后可换新鲜培养基。
表2 使用lipofectamine2000(invitrogen) 转染siRNA产品用量参考
V1:完全或不完全培养基;v2:Opti-MEM® I (无血清、无抗生素,转染专用)
每孔中总体积(v1+v2+v2) | 终浓度 (nM) | siRNA产品 (ul) | lipo2000/孔 (ul) | |
96-well | 100ul (50ul+25ul+25ul) | 100 | 0.5 | 0.25 |
100ul (50ul+25ul+25ul) | 50 | 0.25 | 0.25 | |
100ul (50ul+25ul+25ul) | 30 | 0.15 | 0.25 | |
100ul (50ul+25ul+25ul) | 20 | 0.1 | 0.25 | |
100ul (50ul+25ul+25ul) | 10 | 0.05 | 0.25 | |
24-well | 500ul (400ul+50ul+50ul) | 100 | 2.5 | 1.0 |
500ul (400ul+50ul+50ul) | 50 | 1.25 | 1.0 | |
500ul (400ul+50ul+50ul) | 30 | 0.75 | 1.0 | |
500ul (400ul+50ul+50ul) | 20 | 0.5 | 1.0 | |
500ul (400ul+50ul+50ul) | 10 | 0.25 | 1.0 | |
12-well | 1mL (800ul+100ul+100ul) | 100 | 5.0 | 2.0 |
1mL (800ul+100ul+100ul) | 50 | 2.5 | 2.0 | |
1mL (800ul+100ul+100ul) | 30 | 1.5 | 2.0 | |
1mL (800ul+100ul+100ul) | 20 | 1.0 | 2.0 | |
1mL (800ul+100ul+100ul) | 10 | 0.5 | 2.0 | |
6-well | 2mL (1500ul+250ul+250ul) | 100 | 10 | 5.0 |
2mL (1500ul+250ul+250ul) | 50 | 5.0 | 5.0 | |
2mL (1500ul+250ul+250ul) | 30 | 3.0 | 5.0 | |
2mL (1500ul+250ul+250ul) | 20 | 2.0 | 5.0 | |
2mL (1500ul+250ul+250ul) | 10 | 1.0 | 5.0 |
注:表中数据仅供参考,对于部分细胞类型的转染试剂用量可进一步优化。
3) 效果检测
转染完成后24-72h均可进行siRNA沉默效果检测,最佳检测时间与细胞类型,转染试剂,检测目的等相关。
1)RNA水平的检测:mRNA是检测siRNA 沉默效率的最佳指标,siRNA转染后24-72h即可检测到靶基因mRNA表达明
显降低,检测方法宜采用qPCR检测方法。
注:引物设计质量很重要,需要确保检测引物有效性。
2)蛋白水平的检测:蛋白是RNAi沉默效率的重要指标,其检测手段主要为Western Blot等。检测时间受细胞内蛋白质
表达量、半衰期等因素的影响,一般为 48-96h。
3)功能筛选:应用EdU细胞增殖、EdUTP细胞凋亡等方法进行细胞功能筛选。
对照转染图:
敲低效率验证: